微生物性食源性疾病占比39%
蜡样芽胞杆菌（Bacillus cereus）是基于菌特检测一种兼性需氧的革兰氏阳性菌，产芽胞，环介广泛分布于土壤、温扩水、增技空气和各类生熟食品中。术的素蜡食用了该菌污染的产呕食品容易导致食物中毒，引起的吐毒食物中毒类型主要包括腹泻型中毒和呕吐型中毒，其中腹泻型中毒主要与某些菌株分泌肠毒素相关，样芽异性而呕吐型中毒主要是胞杆由于某些菌株产生呕吐毒素引起。
国内外均有报道蜡样芽胞杆菌引起的基于菌特检测食物中毒事件。1950年在挪威发表了第一起蜡样芽胞杆菌食物中毒的环介报告，之后许多国家，温扩尤其是增技欧洲一些国家相继报告了类似食物中毒的爆发。挪威和荷兰将蜡样芽胞杆菌认定为食品中最易检出的术的素蜡病原微生物。我国在上世纪70年代报道蜡样芽胞杆菌中毒事件后，产呕此类中毒事件的报道逐年增多。据2008~2015年我国国家食源性疾病监测网统计资料显示，微生物性食源性疾病占比39%，其中蜡样芽胞杆菌引起的中毒事件占17%，在细菌性病原体中排在第三，危害极为严重。呕吐型蜡样芽胞杆菌引发的食物中毒时有发生，约占蜡样芽胞杆菌食物中毒总数的75.9%。因此，建立一种快速、特异的方法检测食品中产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌至关重要。
目前检测蜡样芽胞杆菌的方法是食品安全国家标准食品微生物学检验蜡样芽胞杆菌（GB4789.14-2014），主要包括增菌、分离培养、镜检、生化鉴定、生化分型。对于分离的蜡样芽胞杆菌主要是采用PCR或荧光定量PCR的方法鉴定其是否是呕吐毒株（呕吐毒素合成酶基因存在与否）。环介导等温扩增技术（loop-mediated isothermal amplification，LAMP）是一种新兴的检测技术，它以其特异性强、等温灵敏、操作简单、产物易检测等优点在食品安全检测等领域得到了日益广泛的应用。在食源性致病菌方面，目前已经建立了副溶血性弧菌（Vibrioparahaemolyticus）、沙门氏菌（Salmonella spp.）、克罗诺杆菌（Cronobacter spp.）和蜡样芽胞杆菌等致病菌的LAMP技术，但没有从蜡样芽胞杆菌中区分出产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌的LAMP检测方法报道。本研究旨在以产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌基因cesB为靶基因，设计LAMP反应特异性引物，构建LAMP反应体系，建立一种产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌的特异快速检测技术，为卫生检验和食品质量安全提供技术保障，不断提高我国食品安全与公共卫生控制水平。
1材料与方法
1.1菌株
本试验收集菌株62株，所有菌株均由广东省微生物研究所提供。
1.2培养基和试剂
胰蛋白胨肉汤、LB肉汤等培养基：广东环凯微生物科技有限公司；Bst DNA聚合酶：NEB公司；细菌基因组DNA提取试剂盒，2×PCR Mix：广州东盛生物科技有限公司；显色剂：广州迪奥生物科技有限公司；dNTPs，DNA Marker2000：生工生物工程（上海）股份有限公司；MgSO4和甜菜碱：Sigma公司。
1.3主要仪器
低温高速离心机：SIGMA 3K30，德国sigma公司；酶标仪：EPOCH2，美国BioTek公司；PCR仪：Mini3220，杭州朗基科学仪器有限公司；电泳仪：DDR-6B，北京六一生物科技有限公司；凝胶成像系统：Tanon-4600SF，上海天能科技有限公司；移液枪：德国Eppendorf公司；生化培养箱：SPX-150B-Z，上海博迅实业有限公司医疗设备厂；恒温水浴锅：XMTD-8222，上海精宏实验设备有限公司。
1.4方法
1.4.1细菌培养
将菌株接种至在胰蛋白胨肉汤（TSB）培养，（36±1）℃培养16~18 h。
1.4.2 DNA抽提
试剂盒法：按照试剂盒说明书提取细菌基因组DNA。煮沸法：取1 mL菌液或样品增菌液于12000 r/min离心5 min，弃上清。加入200μL无菌水洗涤1次后，用100μL TE悬浮混匀，于100℃水浴10 min，冰浴3 min，12000 r/min离心5 min，取上清备用。
1.4.3引物设计
（1）LAMP引物设计：以产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌cesB为靶基因，设计LAMP引物，引物序列见表1，由上海生物工程公司合成。（2）PCR引物：参考文献序列，由上海生物工程公司合成。
1.4.4 LAMP扩增
LAMP反应体系25μL，包括2.5μL10×Thermopol反应缓冲液、1.6 mmol/L dNTPs、0.2μmol/L上游外引物F3、0.2μmol/L下游外引物B3、1.6μmol/L上游内引物FIP、1.6μmol/L下游内引物BIP、6 mmol/L MgSO4、1 mol/L甜菜碱、8 U Bst DNA聚合酶、3μL细菌DNA模板，加dd H2O至体积25μL，加入显色剂在PCR管盖。扩增反应条件：63℃恒温水浴1 h，不用开盖，通过颜色直接观察结果。
1.4.5 PCR扩增
PCR反应体系和PCR扩增程序参考张志鸿等的报道。用1×TAE电泳缓冲液配制2%琼脂糖凝胶，上5μL，100 V电压下30 min电泳，用凝胶成像系统观察电泳结果并进行分析。
1.4.6 LAMP特异性验证
将表2中所有菌株接种至TSB增菌液中37℃培养16~18 h后，取1 mL菌液用煮沸法提取DNA，然后进行LAMP扩增，验证LAMP反应体系的特异性。
1.4.7 LAMP灵敏度评价
1.4.7.1基因组灵敏度
将产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌F4810/72在TSB增菌液中37℃培养16~18 h后，取1 mL菌液，用DNA抽提试剂盒抽提DNA，用酶标仪测定DNA浓度。将上述DNA进行梯度稀释，进行LAMP扩增，评价该方法的DNA灵敏度。
1.4.7.2纯菌灵敏度
将产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌F4810/72在TSB增菌液中37℃培养16~18 h后，取1 mL菌液，进行梯度稀释，用DNA抽提试剂盒抽提不同稀释度的DNA，进行LAMP扩增，评价该方法的纯菌灵敏度。同时对含不同稀释度的菌液进行平板计数。
1.4.8人工污染样品检测
称取经国标方法检验不含蜡样芽胞杆菌的新鲜米饭样品25 g至225 mL LB培养基中，接种计数的产呕吐毒素的蜡样芽胞杆菌F4810/72菌液，人工模拟样品的最终浓度分别为100CFU/g、101CFU/g、102CFU/g和103CFU/g，37℃静置培养，在0、2、4和6 h后分别从增菌培养基中取1 mL上清液于无菌离心管中，提取DNA进行LAMP检测。同时对含不同稀释度的菌液进行平板计数。
1.4.9食品中产呕吐毒素蜡样芽胞杆菌的检测
购买各大超市和快餐店的食品72份，其中熟食24份，水产品24份，奶制品24份。每份样品平均分成2份，一份按GB 4789.14-2014分离检测；另一份直接用胰酪胨大豆多黏菌素肉汤培养基增菌培养，取1.5 mL增菌液按上述煮沸法提取DNA，进行LAMP检测。
声明：本文所用图片、文字来源《现代食品科技》2020年12月8日，版权归原作者所有。如涉及作品内容、版权等问题，请与本网联系
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